{"id":172180,"date":"2026-01-12T15:27:30","date_gmt":"2026-01-12T15:27:30","guid":{"rendered":"https:\/\/enolife.com.ar\/es\/?p=172180"},"modified":"2026-01-16T11:38:45","modified_gmt":"2026-01-16T11:38:45","slug":"inoculan-mildiu-en-hojas-de-vid-para-detectar-la-diferencia-entre-sanas-y-enfermas-y-limitar-fungicidas","status":"publish","type":"post","link":"https:\/\/enolife.com.ar\/es\/inoculan-mildiu-en-hojas-de-vid-para-detectar-la-diferencia-entre-sanas-y-enfermas-y-limitar-fungicidas\/","title":{"rendered":"Inoculan mildiu en hojas de vid para detectar la diferencia entre sanas y enfermas y limitar fungicidas"},"content":{"rendered":"\n

Un grupo de investigadores de la Facultad de Ciencias de la Agricultura de la Universidad de Hohenheim, en Stuttgart, Alemania, desarroll\u00f3 un m\u00e9todo para infectar artificialmente hojas de vid con el pat\u00f3geno del mildiu o peronospora, lo que permite un reconocimiento y diferenciaci\u00f3n precisa de las hojas sanas y las enfermas. Con t\u00e9cnicas de teledetecci\u00f3n, luego se pueden dosificar de manera dirigida los fungicidas necesarios, evitando la sobreaplicaci\u00f3n y contribuyendo a sanear el medio ambiente.<\/strong><\/em><\/h4>\n\n\n\n
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La enfermedad del mildiu<\/strong> o peronospora<\/strong>, causada por el oomycete Plasmopara<\/em> viticola<\/em> (P. viticola)<\/strong>, afecta a la mayor\u00eda de los cultivos de vid (Vitis<\/em> vinifera L.) en todo el mundo y generalmente se lo controla con fungicidas<\/strong>, que a menudo se aplican en exceso. La reducci\u00f3n del uso de fungicidas a trav\u00e9s de la detecci\u00f3n temprana de pat\u00f3genos es, por lo tanto, un objetivo importante, que podr\u00eda ser apoyado por t\u00e9cnicas de detecci\u00f3n remota \u00f3ptica<\/strong> emergentes que detecten cambios sutiles en el fenotipo de la hoja asociado con la enfermedad. <\/p>\n\n\n\n

Sin embargo, la variabilidad considerable en las estructuras de las hojas de la vid plantea un desaf\u00edo importante en la aplicaci\u00f3n de t\u00e9cnicas de teledetecci\u00f3n \u00f3ptica para la identificaci\u00f3n temprana del moho velloso caracter\u00edstico de la peronospora. <\/p>\n\n\n\n

Para abordar este problema, se ide\u00f3 un m\u00e9todo simple y eficaz para inocular artificialmente la infecci\u00f3n de P. viticola<\/em> en vides vivas, permitiendo infecciones programadas con un per\u00edodo de incubaci\u00f3n promedio de 5 d\u00edas. Este m\u00e9todo no es destructivo, est\u00e1 altamente dirigido y difiere de las t\u00e9cnicas existentes al evitar la eliminaci\u00f3n de hojas y los patrones de infecci\u00f3n difusa, mientras que es r\u00e1pido y f\u00e1cil de realizar. <\/p>\n\n\n\n

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La peronospora puede tener efectos devastadores sobre las uvas si no se la detecta y evita a tiempo.<\/strong><\/em><\/figcaption><\/figure><\/div>\n\n\n
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La restricci\u00f3n de la infecci\u00f3n a \u00e1reas peque\u00f1as y definidas en las hojas individuales permite comparaciones directas entre el tejido sano e infectado dentro de la misma hoja, minimizando los efectos de variabilidad. Este protocolo de infecci\u00f3n precisa ofrece ventajas significativas para las aplicaciones de detecci\u00f3n remota, el desarrollo de modelos de detecci\u00f3n de pat\u00f3genos y el apoyo a an\u00e1lisis detallados del desarrollo, lo que contribuye a una mejor detecci\u00f3n temprana a trav\u00e9s de m\u00e9todos de visualizaci\u00f3n normales y t\u00e9cnicas de detecci\u00f3n remota \u00f3ptica emergentes y una posible reducci\u00f3n en el uso de fungicidas.<\/strong><\/p>\n\n\n\n

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Introducci\u00f3n<\/strong><\/p>\n\n\n\n

La mayor\u00eda de los cultivos de las principales especies de vid del mundo (Vitis<\/em> vinifera L.), son altamente susceptibles a la Plasmopara viticola<\/em>, el agente causal del mildiu<\/strong> o peronospora<\/strong>. La gravedad de la infecci\u00f3n est\u00e1 fuertemente influenciada por las condiciones ambientales locales. Bajo clima h\u00famedo y moderado, P.<\/em> viticola<\/em> penetra los estomas de las hojas e inicialmente coloniza el espacio intercelular de la mesofila esponjosa, causando da\u00f1os sustanciales a los tejidos verdes y dando como resultado p\u00e9rdidas significativas de rendimiento y calidad. <\/p>\n\n\n\n

La protecci\u00f3n eficaz de la vid requiere t\u00edpicamente m\u00faltiples aplicaciones de fungicidas. Los esfuerzos para reducir el uso de fungicidas incluyen la replantaci\u00f3n de cultivos resistentes y el despliegue de sistemas de previsi\u00f3n de infecciones como VitiMeteo-Plasmopara.<\/em> Sin embargo, las aplicaciones espec\u00edficas y basadas en las necesidades siguen siendo esenciales para minimizar el impacto ambiental.<\/p>\n\n\n\n

El monitoreo convencional de enfermedades en cualquier cultivo se basa en la evaluaci\u00f3n visual, que es subjetiva, lenta y limitada al espectro visible. Los avances en la detecci\u00f3n remota basada en modelos y las tecnolog\u00edas de sensores \u00f3pticos ahora permiten la detecci\u00f3n temprana de cambios fisiol\u00f3gicos en las plantas<\/strong> asociadas con el estr\u00e9s bi\u00f3tico o abi\u00f3tico. Los sensores espectrales permiten la identificaci\u00f3n temprana de enfermedades de las plantas de los cambios bioqu\u00edmicos y biof\u00edsicos mediante la detecci\u00f3n de cambios relacionados con la infecci\u00f3n en la reflectancia de las hojas. <\/p>\n\n\n\n

Sin embargo, la validaci\u00f3n en el campo de las enfermedades de la vid sigue siendo un desaf\u00edo, ya que la arquitectura de las copas de la vid puede oscurecer las hojas afectadas, y las tensiones abi\u00f3ticas y bi\u00f3ticas introducen variabilidad de la se\u00f1al. Adem\u00e1s, los estudios que utilizan datos hiperespectrales y multiespectrales han puesto de relieve los principales obst\u00e1culos, incluida la comparabilidad limitada entre los tejidos de la vid sanos e infectados y baja resoluci\u00f3n espacial, que se informa en otros cultivos. La morfolog\u00eda de las hojas, la estructura y la variabilidad de la edad dentro y a trav\u00e9s de los cultivos de la vid y otras especies, como el ma\u00edz, complican a\u00fan m\u00e1s los an\u00e1lisis cualitativos y cuantitativos, que requiere muestreo extenso. Los enfoques adicionales, como la formaci\u00f3n de im\u00e1genes t\u00e9rmicas, han demostrado que la actividad pat\u00f3gena temprana se puede detectar en funci\u00f3n de la din\u00e1mica alterada de la temperatura de la hoja de la vid, aunque las variables ambientales como la lluvia y la radiaci\u00f3n solar pueden distorsionar los resultados. Por ejemplo, se demostr\u00f3 que los efectos de inoculaci\u00f3n sobre la temperatura de la hoja difieren entre las vides irrigadas y las vides sometidas a estr\u00e9s por agua. <\/p>\n\n\n\n

En conjunto, estos hallazgos subrayan la necesidad de metodolog\u00edas perfeccionadas para apoyar los enfoques de aprendizaje autom\u00e1tico y la modelizaci\u00f3n para la capacitaci\u00f3n de tecnolog\u00edas de teledetecci\u00f3n \u00f3ptica. Por lo tanto, los objetivos de este estudio fueron: 1) establecer sitios de infecci\u00f3n<\/strong> a peque\u00f1a escala que permitieran la referenciaci\u00f3n precisa de tejidos sanos e infectados dentro de la misma hoja, 2) inducir infecciones aisladas<\/strong> y predefinidas para permitir observaciones de alta resoluci\u00f3n, y 3) desarrollar un protocolo de infecci\u00f3n simple y r\u00e1pido<\/strong> en condiciones controladas para avanzar en la detecci\u00f3n de enfermedades basadas en sensores y profundizar la comprensi\u00f3n de la<\/em> patog\u00e9nesis de P.<\/em> viticola<\/em>.<\/p>\n\n\n\n

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Materiales y m\u00e9todos<\/strong><\/p>\n\n\n\n

1.<\/strong> Material de la vid<\/strong>. Se utilizaron plantas clonales del cultivo de Vitis vin\u00edfera<\/em> Bacchus, conocido por su alta susceptibilidad a P<\/em>. viticola<\/em>. Las vides se cultivaron en macetas en condiciones de invernadero controladas y libres de enfermedades y variaron en edad de dos a cuatro a\u00f1os. Para los procedimientos de preinfecci\u00f3n e infecci\u00f3n, s\u00f3lo se seleccionaron las hojas completamente ampliadas cuarta y quinta. Durante el per\u00edodo de incubaci\u00f3n posterior a la infecci\u00f3n, las macetas se cubrieron para evitar la humedad excesiva del suelo causada por los niveles de humedad elevados.<\/p>\n\n\n\n

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2. Material pat\u00f3geno<\/strong>. El aislado de campo 1136 de P.<\/em> viticola<\/em>, obtenido de G\u00f3mez-Zeled\u00f3n et al.<\/em> (2013), y sus clones derivados se utilizaron exclusivamente. Este aislado se eligi\u00f3 en base a su alta virulencia contra una amplia gama de genotipos de vid. La esporangia se propag\u00f3 recientemente o se almacenaron en seco a -70 \u00b0C para su uso posterior.<\/p>\n\n\n\n

3. Soluci\u00f3n de propagaci\u00f3n<\/strong><\/p>\n\n\n\n

Un m\u00e9todo de propagaci\u00f3n in vitro<\/em> para P.<\/em> viticola<\/em>, desarrollado adicionalmente en base a G\u00f3mez-Zeled\u00f3n et al.<\/em> (2013), fue utilizado. La propagaci\u00f3n se llev\u00f3 a cabo en agua destilada suplementada con alb\u00famina de suero bovino (BSA) y nitrato de calcio para mejorar la estabilidad de los pat\u00f3genos y prolongar la viabilidad de las hojas desprendidas, asegurando de este modo la formaci\u00f3n consistente de esporangia. El medio de propagaci\u00f3n consisti\u00f3 en 2 \u03bcg\/ml de BSA (Merck Darmstadt,Alemania, cat. n o<\/sup>o 1.12018.0025) y 0,42 \u03bcg\/ml de Ca(NO 3)2 *4 H 2 O (Carl Roth Karlsruhe, Alemania, cat. n<\/sup> o P740.4). La soluci\u00f3n se almacen\u00f3 a 8 \u00b0C y permaneci\u00f3 estable durante al menos dos semanas.<\/p>\n\n\n\n

4. Condiciones ambientales<\/strong>. La propagaci\u00f3n, la infecci\u00f3n y la incubaci\u00f3n se realizaron en condiciones ambientales controladas de la siguiente manera:<\/p>\n\n\n\n